Dans les pays développés, le déclin des naissances vivantes et le vieillissement des sociétés entraînent des changements démographiques négatifs, qui constituent un problème majeur, tant sur le plan social que économique. En dépit de l’efficacité croissante des méthodes de reproduction assistée (TAR) et de fécondation in vitro (FIV) et d’une compréhension plus approfondie des processus physiologiques entourant l’accouchement, le succès des méthodes de reproduction assistée est inférieur au succès théoriquement possible. Entre-temps, le nombre de demandeurs de traitements contre l’infertilité dans le monde, et donc le nombre de traitements procréatifs assistés, augmente. Actuellement, près de 3 à 4 % des enfants naissent de cette manière, par rapport à toutes les naissances. Seulement 25 % à 30 % des embryons implantés pendant la FIV atteignent une grossesse réussie se terminant par l’accouchement. Les techniques artistiques ont mené à une grossesse réussie en 1995 dans un quart des implants embryonnaires et 28 % des cas après dix ans. À l’heure actuelle, après encore dix ans, environ 30 % des implants finissent par accoucher vivants. Ce faible taux de réussite est également utilisé en Hongrie pour compenser la pratique de l’implantation multiple d’embryons, mais les grossesses multiples entraînent des risques accrus pour la santé. Selon ce consensus international, la meilleure solution est le transfert unique d’embryons. Une évaluation plus précise de la viabilité attendue de l’embryon est essentielle pour faire du transfert d’embryon unique une option viable. La méthode de routine utilise des timbres morphologiques pour estimer la qualité des embryons. On examine la symétrie de l’embryon, sa vitesse de division, la taille du blastomère, la granularité du plasma cellulaire. Cependant, il est courant qu’un embryon qui semble être parfait d’un point de vue morphologique ne réponde pas à ses attentes. Alternativement, les marqueurs moléculaires et les biomarqueurs de la viabilité de l’embryon sont pris en considération. Ce faisant, parce que, pour des raisons éthiques, l’embryon lui-même ne peut pas être testé dans l’environnement nutritif entourant l’embryon pendant son développement avant l’implantation. Le principe de base de la recherche sur les biomarqueurs est qu’il n’est pas nécessaire de connaître l’explication exacte du phénomène biologique ou biochimique observé, un biomarqueur peut être n’importe quelle molécule dont les changements quantitatifs ou qualitatifs ont une valeur diagnostique précise et reproductible. La présente offre est basée sur nos études antérieures, au cours desquelles nous visions à identifier des biomarqueurs moléculaires similaires qui peuvent être détectés à partir de fluides reproducteurs. Dans cette recherche, nous avons identifié une fraction de la protéine humaine d’haptoglobine à l’aide d’une spectrométrie de masse associée à la chromatographie liquide et filtré avec succès des embryons morphologiquement non endommagés mais non viables dans une étude rétrospective aveugle. En plus de tout cela, l’inconvénient de notre méthode est qu’elle exige la présence d’un instrument coûteux et complexe (LC-MS), qui nécessite des auxiliaires supplémentaires pour fonctionner. Cela est possible dans un laboratoire de recherche, mais n’est en aucun cas compatible avec le déroulement de la routine clinique (les mesures de spectrométrie de masse ne peuvent pas être effectuées régulièrement, rassurantes et évaluées pendant le temps disponible jusqu’à ce que l’embryon soit récupéré dans la mère). Le concept de «Lab-on-a-Chip» a été introduit dans la littérature à l’Université de Twente, aux Pays-Bas, au début des années 1990. La technologie LOC permet l’intégration de procédures de diagnostic en laboratoire dans un dispositif utilisant des solutions microfluidiques miniaturisées. Avec le développement de l’industrie électronique, une grande variété de méthodes de puces sont apparues, basées sur l’utilisation du silicium. Dans les systèmes Lab-on-a-Chip, les microtechnologies permettent l’intégration des fonctions de gestion et de détection d’échantillons en centimètres carrés de taille de puce. Les unités de base de ces microsystèmes sont des systèmes microfluidiques, qui peuvent effectuer des tâches spécifiques de manipulation des fluides, telles que la séparation en flux des liquides à tester, des échantillons biologiques, qui peuvent être décomposés en composants de l’échantillon et analysés séparément. La microfluidique (microfluidique) présente de nombreux avantages par rapport aux méthodes de laboratoire classiques. Dans les canaux à petites dimensions caractéristiques (environ 100 µm), le débit est généralement laminaire (le «nombre Reynolds» dans un microcanal est très faible), ce qui est une condition préalable à un écoulement constant dans le canal, qui est, par définition, une condition essentielle pour une quantification précise. Dans de tels microcanaux ou même des nanocanaux...