I den udviklede verden fører nedgangen i levende fødsler og samfundets aldring til negative demografiske ændringer, som er et stort problem, både socialt og økonomisk. På trods af den øgede effektivitet af assisteret reproduktion (ART) og in vitro-befrugtningsmetoder (IVF) og en mere indgående forståelse af de fysiologiske processer omkring fødsel, er succesen med assisterede reproduktionsmetoder ikke teoretisk mulig succes. I mellemtiden er antallet af ansøgere til infertilitetsbehandlinger på verdensplan, og dermed antallet af assisterede reproduktive behandlinger, stigende. I øjeblikket fødes næsten 3-4 % af børnene på denne måde sammenlignet med alle fødsler. Kun 25 % til 30 % af de embryoner, der implanteres under IVF, opnår en vellykket graviditet, der slutter med fødsel. Kunstteknikker førte til vellykket graviditet i 1995 i en fjerdedel af embryoimplantaterne og 28 % af tilfældene efter ti år. I øjeblikket, efter yderligere ti år, ender ca. 30 % af implantaterne levende. Denne lave succesrate anvendes også i Ungarn til at kompensere for praksis med multipel implantation af embryoner, men flere graviditeter medfører øgede sundhedsrisici. Ifølge denne internationale konsensus er den bedste løsning en enkelt embryonoverførsel. En mere præcis vurdering af embryoets forventede levedygtighed er afgørende for at gøre overførsel af et enkelt embryon til en holdbar løsning. Rutinemetoden anvender morfologiske stempler til at vurdere kvaliteten af embryoner. Embryoets symmetri, dets opdelingshastighed, blastomerens størrelse, celleplasmaets granularitet undersøges. Det er dog almindeligt, at et embryon, som synes at være perfekt set ud fra et morfologisk synspunkt, ikke lever op til sine forventninger. Alternativt overvejes molekylære markører og biomarkører for embryoets levedygtighed. Derved kan selve embryoet af etiske grunde ikke testes i det næringsstofmiljø, der omgiver embryoet, under dets udvikling forud for implantationen. Det grundlæggende princip for biomarkørforskning er, at det ikke er nødvendigt at være opmærksom på den nøjagtige forklaring af det observerede biologiske eller biokemiske fænomen, en biomarkør kan være ethvert molekyle, hvis kvantitative eller kvalitative ændringer har en nøjagtig, reproducerbar diagnostisk værdi. Det nuværende bud er baseret på vores tidligere undersøgelser, hvor vi sigtede mod at identificere lignende molekylære biomarkører, der kan påvises fra avlsvæsker. I denne forskning identificerede vi en brøkdel af det humane haptoglobinprotein ved hjælp af et massespektrometri forbundet med væskekromatografi og med succes filtrerede morfologisk ubeskadigede, men ikke-levedygtige embryoner i en blind, retrospektiv undersøgelse. Udover alt dette, ulempen ved vores metode er, at det kræver tilstedeværelsen af et dyrt og komplekst instrument (LC-MS), som kræver yderligere hjælpeenheder til at fungere. Dette er muligt i et forskningslaboratorium, men er på ingen måde foreneligt med den kliniske rutines tidsforløb (massespektrometrimålinger kan ikke udføres rutinemæssigt, beroligende og evalueres i den tid, der er til rådighed, indtil det embryo, der skal genfindes i moderen). Begrebet "Lab-on-a-Chip" blev indført i litteraturen ved universitetet i Twente, Nederlandene, i begyndelsen af 1990'erne. Loc teknologi gør det muligt at integrere laboratoriediagnostiske procedurer i et udstyr, der bruger miniaturiserede mikrofluidiske løsninger. Med udviklingen af elektronikindustrien er der opstået en bred vifte af chipmetoder baseret på brugen af silicium. I Lab-on-a-Chip-systemer gør mikroteknologi det muligt at integrere prøvehåndterings- og detektionsfunktioner i kvadratcentimeter af chipstørrelse. De grundlæggende enheder i disse mikrosystemer er mikrofluidiske systemer, som kan udføre specifikke væskemanipulationsopgaver, f.eks. strømningsbaseret separation af de væsker, der skal testes, biologiske prøver, som kan opdeles i prøvens komponenter og analyseres separat. Mikrofluidika (mikrofluidika) har mange fordele i forhold til klassiske laboratoriemetoder. I kanaler med små (ca. 100 µm) karakteristiske dimensioner er strømmen typisk laminar (Reynolds-tallet i en mikrokanal er meget lav), hvilket er en forudsætning for en konstant strøm i kanalen, hvilket pr. definition er en væsentlig forudsætning for en nøjagtig kvantificering. I sådanne mikrokanaler eller endnu snævrere nanokanaler kan der opnås store koncentrationsforskelle på meget korte afstande under laminar flowforhold, hvilket ikke kun giver mulighed for kvalitative, men også kvantitative bestemmelser i meget små mængder. En anden lille fordel ved mikroflowchips er den minimale reagensefterspørgsel. Lille størrelse tillader nogle nanoliter volumen prøve eller endda