I den utvecklade världen leder nedgången i levande födslar och samhällenas åldrande till negativa demografiska förändringar, som är ett stort problem, både socialt och ekonomiskt. Trots den ökande effektiviteten hos metoder för assisterad befruktning (ART) och in vitro-befruktning (IVF) och en mer djupgående förståelse av de fysiologiska processerna kring förlossning är framgången med metoder för assisterad befruktning inte möjlig i teorin. Samtidigt ökar antalet sökande till infertilitetsbehandlingar över hela världen, och därmed antalet assisterade reproduktiva behandlingar. För närvarande föds nästan 3–4 % av barnen på detta sätt, jämfört med alla födslar. Endast 25 % till 30 % av de embryon som implanterats under IVF når en framgångsrik graviditet som avslutas med förlossning. Konsttekniken ledde till framgångsrik graviditet 1995 i en fjärdedel av embryoimplantaten och 28 % av fallen efter tio år. För närvarande, efter ytterligare tio år, kommer ungefär 30 % av implantaten att föda levande. Denna låga framgångsgrad används också i Ungern för att kompensera för multipla embryoimplantation, men flera graviditeter medför ökade hälsorisker. Enligt detta internationella samförstånd är den bästa lösningen en enda embryoöverföring. En mer exakt bedömning av embryots förväntade livskraft är nödvändig för att göra enstaka embryoöverföringar till ett genomförbart alternativ. Rutinmetoden använder morfologiska stämplar för att uppskatta embryonas kvalitet. Embryots symmetri, dess delningshastighet, storleken på blastomeren och cellplasmans granularitet undersöks. Det är dock vanligt att ett embryo som verkar vara perfekt ur morfologisk synvinkel inte uppfyller sina förväntningar. Alternativt beaktas molekylära markörer och biomarkörer för embryoviabilitet. På så sätt kan embryot av etiska skäl inte testas i den näringsmiljö som omger embryot under dess utveckling innan det implanteras. Den grundläggande principen för biomarkörforskning är att det inte är nödvändigt att vara medveten om den exakta förklaringen av det observerade biologiska eller biokemiska fenomenet, en biomarkör kan vara vilken molekyl vars kvantitativa eller kvalitativa förändringar har ett exakt, reproducerbart diagnostiskt värde. Föreliggande anbud bygger på våra tidigare studier, under vilka vi siktade på att identifiera liknande molekylära biomarkörer som kan upptäckas från avelsvätskor. I denna forskning identifierade vi en bråkdel av det mänskliga haptoglobinproteinet med hjälp av en masspektrometri i samband med vätskekromatografi och framgångsrikt filtrerade morfologiskt oskadade men icke-viabla embryon i en blind, retrospektiv studie. Förutom allt detta är nackdelen med vår metod att den kräver närvaro av ett dyrt och komplext instrument (LC-MS), som kräver ytterligare hjälpaggregat för att fungera. Detta är möjligt i ett forskningslaboratorium, men är inte på något sätt förenligt med den kliniska rutinens tidsförlopp (masspektrometrimätningar kan inte utföras rutinmässigt, tryggt och utvärderas under den tid som är tillgänglig tills embryot återvinns till modern). Begreppet ”Lab-on-a-Chip” introducerades i litteraturen vid universitetet i Twente, Nederländerna, i början av 1990-talet. Loc-tekniken gör det möjligt att integrera laboratoriediagnostikförfaranden i en produkt med hjälp av miniatyriserade mikrofluidiska lösningar. I och med utvecklingen av elektronikindustrin har en mängd olika chipmetoder uppstått, baserade på användning av kisel. I Lab-on-a-Chip-system möjliggör mikrotekniken integrering av provhanterings- och detektionsfunktioner i kvadratcentimeter av chipstorlek. Grundenheterna i dessa mikrosystem är mikrofluidiska system som kan utföra specifika vätskemanipulationsuppgifter, såsom flödesbaserad separation av de vätskor som ska testas, biologiska prover, som kan delas upp i provkomponenterna och analyseras separat. Mikrofluidik (mikrofluidik) har många fördelar jämfört med klassiska laboratoriemetoder. I kanaler med små (cirka 100 µm) karakteristiska dimensioner är flödet typiskt laminärt (Reynoldstalet i en mikrokanal är mycket lågt), vilket är en förutsättning för ett konstant flöde i kanalen, vilket per definition är ett nödvändigt villkor för korrekt kvantifiering. I sådana mikrokanaler eller till och med smalare nanokanaler kan stora koncentrationsskillnader uppnås på mycket korta avstånd under laminära flödesförhållanden, vilket möjliggör inte bara kvalitativa utan även kvantitativa bestämningar i mycket små volymer. En annan liten fördel med mikroflödeschips är minsta reagensbehov. Liten storlek tillåter vissa nanoliter volymprov eller till och med